Grupo de Trabajo de la SECAL
S. Grané, P-J. Cardona, C. Eguiluz, J. Bravo y L. Parra (Coordinador)
La SECAL designó un Grupo de Trabajo con el objetivo de recoger en un documento las recomendaciones sobre cómo tomar las muestras, con qué frecuencia y los límites aceptables en función del tipo de instalación para control microbiológico de ambientes, superficies y aguas en animalarios. A continuación se presentan las principales conclusiones (el documento completo en español se puede consultar en http://secal.es/wp-content/uploads/2016/08/Recomendaciones-para-Controles-Microbiológicos-y-de-Agua.pdf).
Ambientes y superficies
Puntos de control: superficies y ambientes que están en contacto con los animales. En un animalario convencional, se debería chequear preferentemente el suelo y el aire de la sala. En un animalario SPF (Specific Pathogen Free), daremos prioridad al chequeo del aire de entrada, suelo, paredes y techos. En este tipo de instalaciones, los racks ventilados pueden ser otro punto interesante de control ambiental utilizando un hisopo. En un animalario NCB3 (Nivel de Contención Biológica 3), deberemos añadir además de los indicados en el SPF, la superficie donde trabajemos con los animales (por ej., cabinas de seguridad), así como por criterios de contención (por los patógenos con que se estén trabajando) el área de salida del animalario (vestuario).
Independientemente del tipo de animalario, debemos también controlar todo el entorno inmediato a los animales; es decir, cubetas, rejas, biberones y cualquiera con los que los animales puedan tener un contacto directo. En estos casos, las muestras se tomarán después del proceso de autoclavado, desinfección o saneamiento del material, y previo al uso por parte de los animales.
Parámetros a monitorizar: aerobios mesófilos y hongos filamentosos.
Periodicidad: antes de la apertura de una nueva instalación y mensualmente durante al menos 6 meses tras la apertura. Si se obtienen resultados inferiores a los límites recomendados, posteriormente se considerará suficiente la frecuencia trimestral.
(*) Aplicable cuando es una desinfección, en caso de autoclavado aplica como si fuera un NCB3 o SPF.
Agua
Si bien los sistemas de desinfección o esterilización utilizados pueden ser distintos, deben asegurar una calidad microbiológica aceptable para los animales.
Punto de control: en función del sistema (automático, botella tipo biberón u otro). Se tomará una muestra del punto de salida de agua durante su uso habitual. En caso de botella, tras el periodo más largo de almacenamiento en el centro.
Parámetros a monitorizar: aerobios mesófilos a 22°C, aerobios mesófilos a 37°C, Coliformes totales, Escherichia coli, Enterococo, Clostridium perfringens y Pseudomonas aeruginosa.
Periodicidad: como mínimo anualmente, aunque se recomienda trimestralmente para animales inmunodeprimidos y semestralmente para animales alojados durante periodos largos.
Recommendations for microbiological tests of the environment and water in an animal laboratory
Spanish Society for Laboratory Animal Science (SECAL) designated a Working Group with the objective of bringing together in one document the recommendations on sampling methodology and frequency, and the acceptable limits in function of the type of facility, for the microbiological control of environment, surfaces and water in animal laboratories. The main conclusions are given below (the complete document in Spanish is available at http://secal.es/wp-content/uploads/2016/08/Recomendaciones-para-Controles-Microbiológicos-y-de-Agua.pdf)
Spaces and surfaces
Control points: surfaces and spaces that are in contact with the animals. Preferably, in a conventional animal laboratory the floor and the air should be checked. In a Specific Pathogen Free animal laboratory (SPF), priority will be given to checking the inlet air, floor, walls and ceilings. In these types of facilities, the ventilated racks can be another control point of interest, a swab being used to take samples. In a Biosafety Level 3 (BSL3) animal laboratory, in addition to those points indicated in the SPF, we must add the surface where we work with the animals (for example safety cabinets), as well as by containment criteria (for the pathogens being worked with) the exit of the laboratory area (changing room).
Irrespective of the type of animal laboratory, we should also control all of the animals’ immediate surroundings; that is to say, trays, grills, feeding bottles and anything else that the animals could come into direct contact with. In these cases, the samples will be taken after the process of autoclave, disinfection or sanitation of the material, and before use by the animals.
Parameters to be monitored: aerobic mesophils and filamentous fungi.
Frequency: before the opening of a new facility and on a monthly basis for at least 6 months after opening. If the results obtained are below the recommended limits, a quarterly frequency will be considered sufficient subsequently.
Water
While the disinfection or sterilization systems used may be different, they should ensure an acceptable microbiological quality for the animals.
Control point: depending on the system (automatic, feeding-bottle type or other). A sample will be taken from the water outlet point during its regular use. In the case of bottled water, after the longest period of storage at the facility.
Parameters to be monitored: aerobic mesophils at 22°C, aerobic mesophils at 37°C, total coliforms, Escherichia coli, Enterococci, Clostridium perfringens and Pseudomonas aeruginosa.
Frequency: At least annually, although quarterly checks are recommended for immunosuppressed animals and six-monthly checks for animals housed for long periods.
